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Geldex 200 PG高分辨瓊脂糖凝膠層析填料(10-600 kDa)

面議 (具體成交價以合同協議為準)
翌圣生物 2025-08-17 15:02:34
售全國 入駐:2年 等級:銀牌 營業執照已審核
同款產品:蛋白純化(155件)
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核心參數

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產品詳情:

Geldex 200 PG以高交聯度瓊脂糖為骨架,以交聯葡聚糖為填充,兼具葡聚糖的高選擇性和瓊脂糖的物理性能,分辨率高、硬度大、流速快,柱床隨緩沖液濃度變化小,化學性質穩定,非特異性吸附低,回收率高,易于放大,是精細純化階段的良好選擇。

翌圣為您提供蛋白純化實驗整體解決方案,相關產品選購請參考:蛋白純化系列產品-選購指南

 

產品性質

基質

高度交聯的瓊脂糖和葡聚糖

分離范圍

1-100 kDa (線性蛋白),10-600 kDa (球蛋白)

24-44 µm

最大耐壓

0.3 MPa

最大流速

100 cm/h

使用流速

30-50 cm/h

PH穩定性

3~12 (工作),1~14 (CIP,短期)

化學穩定性

0.2 M NaOH、8 M尿素、6 M 鹽酸胍、30%異丙醇、1%SDS、 30%乙腈

滅菌

0.5 M NaOH 2 h,或者121 30 min

儲存緩沖液

20%乙醇,4~30℃

 

運輸和保存方法

1.使用后的Geldex 200 PG應儲存于 20%乙醇中,為了防止乙醇揮發以及微生物生長,建議3個月更換一次新鮮的20%乙醇。

2.放置在4~8冷庫中保存效果更好有效期5年。

 

注意事項

1.凍結可能破壞介質內部結構。 

2.裝柱前最好將介質懸液平衡到室溫。

3.了您的安全和健康,請穿實驗服并戴一次性手套操作。

4.產品僅作科研用途!

 

使用方法

1 裝柱

1.1 層析柱裝填

1)根據層析柱的體積計算需要的 Geldex 介質的量:需要的沉降體積=柱體積×1.15(即壓縮比為1.15)。

2)置換溶液,將膠懸液倒入布氏漏斗,抽去液體,并用約3倍體積的蒸餾水洗滌,(當體積比較大或者條件不具備的時候也可以采用待膠分層后抽去上層溶液,再加入適量蒸餾水攪勻,等到分層后抽去,反復3次的方法置換介質溶液)

3)膠懸液準備,加入沉降膠體積的二分之一到一倍的蒸餾水(可以加入0.1% Tween20可以提高裝柱的效果)攪勻備用。

4)取清洗干凈的 YXK 層析柱(YXK 系列層析柱的直徑從1 cm45 cm的不同規格可以滿足不同規模大小的層析應用),排凈柱底膜氣泡,并在柱子底部保留1 cm高左右的水柱,調整柱子使其垂直于地面。

5)將攪勻后的膠懸液一次緩慢倒入層析柱內(必要時使用裝柱器),注意不要帶入氣泡,倒入后用塑料棒再次攪勻。

6)將上柱頭連接到層析系統或者蠕動泵,排凈上柱頭篩網下面的氣泡(對于直徑小于20 cm的層析柱可以采用將柱頭翻轉向上后用蠕動泵或者洗耳球吸去篩網下面的氣泡),將柱頭放入層析柱內,晃動柱頭使氣泡從柱頭邊緣排出,旋緊密封旋鈕(對于直徑>30 cm 的層析柱,先將密封圈不要旋的太緊,下壓軸頭讓柱體內的液體通過柱頭反出以排出柱頭內的氣泡,然后再旋緊密封旋鈕)。

7)按照 30 cm/h 的速度設定好流速,啟動泵壓柱至膠面穩定(一般在1.5~2 h)。

8)去掉裝柱器(如果有的話),重新安裝柱頭,將壓力設在0.5 MPa,采用恒壓調速的方式壓柱1 h,標記此時的柱床高度。

9)并將柱頭壓至膠面標記位置下面5 mm,裝柱完成。

1.2柱效評價

1)柱效測定可以采用丙酮作為指示劑或者NaCl作為指示劑,按照下表配制指示劑溶液和流動相。

 

丙酮法測柱效

NaCl法測柱效

樣品

1.0%v/v)丙酮水溶液

0.8 M NaCl(溶于水)

樣品體積

1.0%柱體積

1.0%柱體積

流動相

0.4 M NaCl水溶液

流速

20 cm/h

20 cm/h

檢測器

UV 280 nm

電導率

2)計算柱效: 根據UV或者電導率曲線計算理論塔板高度(HETP)、理論塔板數(N)和非對稱因子(As), 公式如下:

HETP=L/N ;N=5.54(VR/Wh)2

其中:VR=保留體積;Wh=半高峰寬;L=柱高;N=理論塔板數;VRWh的單位應一致; As=b/a

其中:a=10%峰高處的第一個半峰寬; b=10%峰高處的第二個半峰寬

image.png

3)結果評價

由以上公式計算出的HETP的數值若小于三倍介質平均顆粒大小且非對稱因子在0.7~1.3則判定為合格(對于Geldex介質每米的塔板數應該大于10000)。對于不理想的柱效需要分析原因并重新裝柱。

 

2 純化流程

2.1 層析柱預處理

對層析柱進行預處理,即采用0.1~0.5 MNaOH對層析柱處理4小時以上以達到清洗、消毒和去除熱源的目的。

2.2 平衡

使用2~3倍柱體積的上樣平衡液平衡柱子,建議在平衡緩沖液中加入至少0.15 MNaCl

2.3 樣品準備

樣品需要過0.45μm以下的濾膜,粘度太高時可以適當稀釋,蛋白濃度一般不超過70mg/mL。

2.4 上樣

一般加載 0.5~2% 柱體積的樣品量,根據分離效果可以適當調整上樣體積。 

2.5 洗脫

繼續用平衡緩沖液沖洗層析柱,收集流出的不同組分,至不再有生物分子流出,一般需要1~1.5個柱體積。

 

3 清洗與再生

1)先用1倍柱體積的 1 M NaCl 去除。

2)對于變性的蛋白的去除,采用 1 M NaOH20 cm/h流速沖洗2個柱體積。

3)對于脂類或脂蛋白的去除,用 4倍柱體積的70%乙醇或30%異丙醇清洗,需注意有機溶劑的濃度以梯度的方式逐漸增加,否則容易產生氣泡。

4)對于無機污染物的去除,采用0.5 M的醋酸沖洗2個柱體積。

5)最后用4倍柱體積的蒸餾水沖洗

 

                                          HB220526

 

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