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2025-01-10 10:50:00界面分選技術
界面分選技術是一種基于物質在兩種不同相界面上的特性差異進行分離的技術。它利用物理或化學方法,在液-液、液-固或氣-液等界面上實現物質的分離和純化。該技術廣泛應用于化工、環保、生物醫藥等領域,對于提高產品質量、降低能耗具有重要意義。在科學儀器領域,界面分選技術常與各種分析儀器結合使用,以實現更高效的分離和分析。您是否有關于科學儀器的具體需求或問題?

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2023-02-10 10:11:21界面流變儀||TRACKER界面流變儀的測量與應用
TRACKER自動多功能界面流變儀通過對液滴或氣泡的輪廓進行數值分析來確定兩種不相溶流體之間的動態表面/界面張力,表征兩種不相溶液體之間的界面特性。 TRACKER界面流變儀能夠提供全方位的測量:-上懸滴的氣泡或液滴          -表面張力(液體/液體)-下懸滴的氣泡或液滴          -界面張力(液體/液體)-躺滴                                  -接觸角(液體/固體)-俘泡法的滴或泡                 -動態接觸角-溫度                                  -界面膨脹流變學-壓力                                  -粘彈性模量                                          -剛性系數                                         -臨界膠束濃度(CMC) 強大的圖像分析軟件:TRACKER?軟件使用算法分析液滴的輪廓,并將其與基于Young-Laplace方程的模型進行擬合,以確定表面張力、 界面張力或接觸角。TRACKER?軟件通過在特定的頻率和振幅下控制液滴體積或面積的變化,來研究界面的流變特性。 智能模塊化設計:-相交換選項-高頻振蕩的壓電選項-壓力傳感器測量氣泡中的拉普拉斯壓力選項-自動臨界膠束濃度CMC測定選項-高溫高壓腔選項 200°C/200bar 應用廣泛:原油:乳液穩定性、表面活性劑對EOR 的影響、油/巖石/液相之間的動態接觸角化妝品:泡沫/乳液穩定性、配方、動態接觸角藥物:包封性、氣體溶解性、乳液穩定性食品:食品泡沫特性、冷凍乳液(冰淇淋)的穩定性、蛋白質、糖或酒精對氣泡大小的影響燃料和瀝青:潤濕性、乳化性能、動態接觸角潤滑劑:潤滑劑/材料之間的接觸角,表面活性劑對潤濕性的影響
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2023-06-08 19:51:36聚合物填充體系的界面作用
聚合物填充體系的界面作用一、聚合物填充體系的界面作用概述聚合物填充體系是一種由多種聚合物材料混合而成,可以形成高強度、低密度、耐腐蝕、耐熱和抗磨損的復合材料。而這些性能的關鍵之一是聚合物填充體系的界面作用。界面是指不同物質之間的分界面或接觸面。在聚合物填充體系中,不同材料之間的界面非常重要,因為它們決定了復合材料的終-極性能。二、聚合物填充體系的界面作用的影響首先,聚合物填充體系的界面作用影響著強度。這是因為不同材料的化學性質和物理性質會有所不同,它們之間的接觸面可能存在著較大的形變、拒水性、表面能等差異。如果界面作用不足,會對復合材料的強度產生負面影響。其次,聚合物填充體系的界面作用影響著耐腐蝕性。界面作用的存在可以減少復合材料中不同材料之間的裂痕和微小缺陷,從而降低腐蝕物進入復合材料內部的風險,并能在一定程度上保護填充體系不被外部環境的損傷影響。此外,聚合物填充體系的界面作用還影響著復合材料的熱分解溫度。由于復合材料通常由多種材料混合而成,不同物質之間的界面會影響到分子鏈的熱行為和分解溫度。如果界面作用足夠強,則分子鏈之間的相互作用較強,導致復合材料的分解溫度會升高。聚合物填充體系的界面作用是復合材料中一個非常關鍵的環節。只有充分理解了材料之間的界面,才能夠有效地設計出高性能、高強度的表面復合材料,為各行業提供更穩定、可靠的產品。三、低場核磁研究聚合物填充體系的界面作用紐邁VTMR20-010V-I小核磁(臺式核磁)可以提供全面的科研解決方案,適用對象涵蓋從橡膠等彈性體材料到生物領域的膜材料和納米材料等多種物質。可以利用紐邁VTMR20-010V-I小核磁(臺式核磁)研究共聚物界面相容性。小核磁(臺式核磁)不僅僅提供單個的檢測值,無損、快速、便捷的分析過程為工藝改進、過程研究等提供全程、長時間的在線監測。以下為用小核磁(臺式核磁)研究共聚物界面相容性的部分相關案例
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2023-06-09 11:41:52人人都是流式高手:Tumor-infiltrating lymphocytes(TILs) 分選秘籍
Tumor-infiltrating lymphocytes (TILs) 是指浸潤腫瘤組織的淋巴細胞。淋巴細胞是免疫系統中的重要組成部分,負責識別和攻擊異常細胞,包括癌細胞。流式細胞術對TILs的分選提供了一個重要的工具,用于表征、純化和研究浸潤腫瘤的免疫細胞群。它有助于研究人員了解TILs的組成、功能和潛在的治 療相關性,推動我們對腫瘤與免疫相互作用的理解。我們使用流式細胞術來分選TILs主要應用場景如下:01、鑒定和表征:流式細胞術允許我們根據TILs表面標記物的特征來鑒定和表征不同的亞群。通過使用針對CD3、CD4、CD8和其他免疫細胞標記物的特異性抗體來標記細胞,我們可以區分和定量TILs中的各種T細胞亞群。這有助于我們了解腫瘤微環境中TILs的組成和多樣性。02、特定TIL亞群的純化:流式細胞術分選使我們能夠分離和純化感興趣的特定TIL亞群。通過基于表面標記物的表達,對細胞進行分選和篩選,我們可以收集純凈的TIL亞群用于進一步的下游應用。這使研究人員能夠研究特定的TIL亞群,并研究其功能特性或基因表達譜。03、功能分析:分選后的TILs可用于功能性分析,以評估其免疫活性和功能。例如,可以測試分選后的TILs的增殖能力、細胞因子產生、對腫瘤細胞的細胞毒性或其他功能性實驗。這些分析提供了有關TIL亞群功能能力和潛在抗腫瘤免疫反應的見解。04、基因組學或蛋白質組學分析:流式細胞術分選可以獲得純凈的TIL細胞群,進而進行基因組學或蛋白質組學分析。通過分析分選TILs的基因表達或蛋白質譜,研究人員可以更深入地了解與TILs在腫瘤免疫中相關的分子機制和信號通路。然而不同于外周血、脾 臟中的淋巴細胞,TILs的流式檢測存在更多的不確定性,需要有效優化包括樣本處理、配色方案、上樣條件以及分析方法等實驗設計的各個方面,才能實現更為準確、真實的多色復雜樣本流式檢測。圖1為外周血來源樣本淋巴細胞分型的流式檢測數據,由圖可見,淋巴細胞群體T、B細胞分群明顯,T細胞亞群也可清晰區分。另外,我們也可以看到,該數據以FSC通道設定閾值,其閾值設定值較低,導致碎片及噪音信號干擾明顯,不過由于血液樣本碎片較少,與細胞分群明顯,故而對最 終結果的影響并不大。圖1 血液樣本淋巴細胞免疫分型流式數據然而,當我們使用同樣的模板檢測腫瘤組織樣本時,數據就出現了明顯問題。實體瘤組織細胞構成復雜,并且在將組織樣本制備成單細胞樣本的過程中會產生大量的細胞碎片,這些雜質細胞及碎片會對流式檢測造成顯著的干擾。如圖2所示,T細胞中出現了大量CD19和CD3雙陽性細胞,不符合已有文獻報道的結果。這些雙陽性細胞主要是由于雜質細胞及碎片的非特異干擾導致的。這些干擾對于流式檢測及流式分選的準確性有很大影響,甚至會導致得出錯誤的結論。圖2 浸潤腫瘤組織的淋巴細胞免疫分型流式數據那么,基于以上數據,我們應該如何優化實驗設計以提高浸潤腫瘤組織的淋巴細胞分選的準確性呢?這里給大家以下幾點建議:01、增加Pan-Marker檢測:這里的Pan-Marker是指目標細胞群均表達,但其他細胞群體及碎片不表達的表面標記。CD45廣泛表達于免疫系統的各個細胞亞群上,但在非免疫細胞上沒有表達或表達很低。因此,在檢測淋巴細胞等免疫細胞時,可通過檢測CD45是否表達來區分免疫細胞及非免疫細胞,以達到排除雜質細胞干擾的目的。02、優化樣本制備方案:對復雜樣本來講,樣本制備方案是否合適決定了流式實驗的成功率。可根據文獻報道并通過預實驗來選擇最 佳的消化酶配方和消化時間,在確保細胞得率的同時盡量減少雜質干擾并最 大限度的保存細胞活性及功能。此外,選擇合適的細胞分離手段進行目的細胞的富集。例如,若針對淋巴細胞檢測,利用Ficoll或Percoll密度梯度離心法富集單個核細胞,可有效去除脂肪、碎片及雜質細胞的干擾。03、進行Fc封閉:組織浸潤的多種細胞,特別是單核/巨噬細胞以及DC細胞高表達抗體Fc端的受體。這些細胞在進行流式抗體標記時,即使不表達相關抗原,也可通過Fc受體非特異性的結合流式抗體的Fc端,從而導致非特異信號。要解決這一問題,可購買商業化Fc封閉試劑,在標記流式抗體前進行Fc封閉即可。04、合理設定閾值:閾值的設定與實驗目的息息相關。在流式分析實驗中,應當設定閾值去除絕大部分噪音及碎片信號,僅保留少量碎片信號即可。在流式分選實驗中,若分選所得細胞用于培養,同樣應當設定閾值去除絕大部分噪音及碎片信號,僅保留少量碎片信號,這樣做可以有效提高分選效率及回收率;但若分選所得細胞用于qPCR、測序,特別是單細胞測序等基因組學應用,由于碎片中含有一定量的核酸片段乃至細胞核碎片,在分選過程中就需要將盡可能多的碎片與目的細胞區分,因此應當設定較低的閾值以暴露足量的碎片信號讓分選儀器檢測到,進而有效確保分選所得目的細胞不摻雜核酸碎片,以免影響后續實驗準確性。05、利用空白熒光通道排除非特異:什么是空白熒光通道呢?舉一個例子,我們設計一個3色實驗標記FITC、PE、PE-Cy7三種染料,沒有標記APC,在檢測時APC通道就是空白通道,是不應該有陽性信號的。復雜樣本中的部分雜質細胞有較強的非特異熒光信號,通常這些非特異的熒光信號在所有的流式熒光通道中均可檢測到。基于這一原理,我們可在上樣時預留一到兩個空白熒光通道,樣本中的目的細胞沒有標記這些空通道的熒光素,在這些通道里面是陰性的,而雜質細胞的非特異信號在空白通道中通常也是陽性的,我們就可以通過設門選擇空白通道中的陰性細胞來達到去除非特異信號的目的。需要注意的是,利用這一方法時要充分考慮補償的影響,最 好選擇與已用通道補償小或無補償的通道作為空白通道。06、增加細胞死活染料:死細胞的非特異性地結合會增加假陽性。死細胞會產生自發熒光干擾特定信號的檢測。在TILs分選中去除死細胞。可以增加數據準確性:死亡的細胞可能會釋放細胞碎片和細胞內成分,這可能會干擾實驗結果,引入假陽性或假陰性結果。通過去除死細胞,可以提高分選結果的準確性和可靠性。并且為分選后TILs細胞活力提供保證:分選到活細胞可以保證后續實驗的有效性和可靠性。死亡細胞不具備正常的生物活性和功能,因此分選到活細胞可以確保后續實驗能夠反映真實的細胞生物學狀態。圖3 無死細胞排除處理的樣本分析比較圖4 有死細胞排除處理的樣本分析比較復蘇后的PBMC在免疫染色之前不添加(圖 3)或者添加ViaKrome 405可固定活性染料(55℃,10分鐘)(圖 4)。然后,使用Perfix-nc細胞染色試劑盒(型號 B10825)處理細胞,并用Granzyme B-FITC、CD19-PE、CD14-ECD、CD79a-PC5.5、CD3-PC7 和 CD45- Krome Orange 進行染色。 數據統計信息顯示:兩個不同條件下,門內細胞在上一門級百分比也不一樣,充分展示了消除死細胞以后的數據效果。
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2022-11-22 19:49:59行業應用 | 射頻導納技術用于電脫鹽罐界面測量 阿美特克 2022-11-17 12:00 發表于上海
被測物料:原油/水界面溫度:最 高 230 度壓力:1.3MpaDrexelbrook 電脫鹽界面液位變送器可以精確測量乳液中的油/水界面,即使是在不穩定的條件下。Drexelbrook 電脫鹽罐液位變送器為控制使用靜電電極加速分離油水界面提供了一個極好的解決方案。這種可靠的液位變送器是專門設計的,以最 大限度地提高油/水分離器的吞吐量,并準確測量乳化液中的界面,即使在不穩定的條件下。這種測量是至關重要的,因為當靜電柵極盡可能接近界面時,分離容器的工作效率最 高。液位變送器允許操作人員保持這個界面靠近柵極(但不要太靠近),以最 大限度地提高分離效率。Drexelbrook 這傳感器沒有移動部件,因此維護成本降低。它的測量不受密度、溫度和壓力變化的影響。主要性能? 通過降低原油中的含水量來提高產量? 測量接近柵極? 測量不受密度、溫度和壓力變化的? 輸出:4- 20ma,電流限制到28 mA?  防爆和本質安全認證
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2023-07-03 11:42:58人人都是流式高手:GFP分選,這還有我不會的?
很常見的場景如下:細胞轉染后,想用流式檢測表達GFP細胞的百分比并且分選,但是不同的設門方法讓GFP陽性細胞百分比看起來有差異,究竟下面哪種策略才適合呢?今天我們主要討論一下FSC和SSC上設門對GFP陽性細胞百分比的影響。讓我們一個一個設門,把每種情況具體看一下。保持FITC通道上的門不變,我們來看一下在前向和側向的散點圖上設門在不同的位置,代表你選擇了什么類型的細胞。只有P1賦予了藍色,其他門的顏色去掉,這樣,我們就可以很方便的看出來細胞群在不同的圖上所處的位置。第 一種設門,除了左下角靠近0的碎片不圈,其他基本都圈上,從第二張SSC-A和SSC-H排粘連的散點圖可以看出來有單個細胞也有粘連細胞,P2門下 GFP陽性細胞百分比為61.36%。第二種設門,只圈最密集的這一群,從第二張SSC-A和SSC-H排粘連的散點圖可以看出來,這部分的細胞基本都是單個的,P2門下 GFP陽性細胞百分比為65.39%,較第 一種高。第三種設門,密集細胞群左邊的和左下角靠近0的碎片不圈,只圈右邊的這兩群,從第二張SSC-A和SSC-H排粘連的散點圖可以看出來有單個細胞也有粘連細胞,P2門下 GFP陽性細胞百分比為65.70%,較第 一種高,和第二種差不多,但是稍微高一點。這樣分析下來,大家最 大的困惑是這三群細胞要不要圈,怎么圈才是最 好的?讓我們在第 一張FSC和SSC的散點圖上根據細胞群設三個門。三個門分別為P1、P4和P5,顯示了三種不同的細胞群。P1顯示為單個細胞,FITC通道上陽性細胞比例為65.54%。P4顯示大部分為粘連的細胞,因此在FITC通道上的陽性細胞比例為71.43%,較P1細胞群高,如果分析時加入這群細胞會增加GFP陽性細胞百分比。如果在單克隆分選中選擇這群,會導致雖然篩選到陽性細胞,但是單克隆源性降低。P5顯示為單個細胞,但是因為FSC較P1小,考慮是細胞狀態不好細胞呈現皺縮導致,所以其在FITC通道上的陽性細胞比例為20.15%,較P1細胞群低的多,如果分析時加入這群細胞則會降低GFP陽性細胞百分比。如果加入7AAD染料,這群會呈現出陽性,所以在分選中這群細胞不該圈選,或者在去除死細胞的門中去除。由此可見,如果只想要分析狀態好的單個細胞的GFP陽性百分比,那你可以選擇P1門的設門方式,當然也可以把P1和P4都選上,再用SSC-A和SSC-H去掉粘連細胞對數據的干擾。練習題如果您在細胞轉染后,流式檢測表達mCherry細胞的百分比時發現,mCherry通道細胞群并沒有呈現明顯分開的兩群(由于細胞在mCherry通道有較高的自發熒光),要怎么確定mCherry細胞百分比并且分選呢?
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